Biologiskt mikroskop på volymen av vävnadsblock
Ett biologiskt mikroskop med en kondensor kan flytta kondensorn upp och ner för att göra dess ljusstyrka måttlig, och kan också ändra bländaren på den variabla ljusanalysatorn för att uppnå en måttlig ljusstyrka på 9b. Om ljuset är i solen kan kondensorn höjas på lämpligt sätt, och bländaren för det variabla optiska bruset kan förstoras på lämpligt sätt. Om ljuset är för starkt kan kondensorn sänkas på lämpligt sätt, och korsningens öppning kan minskas på lämpligt sätt. Om du fortfarande känner dig bländande i det här fallet kan du välja ett lämpligt filter och placera det på fästet under kondensorn. Denna tussah kan få en ljusstyrka som tillfredsställer dig. Naturligtvis är det nödvändigt att få erfarenhet efter en viss period av övning i att justera kondensorns övre och nedre positioner för att ändra bländarstorleken på den optiska avläsningen och välja lämpliga filter.
Ett mycket viktigt problem med biomikroskop är att innehållet av 65 grundämnen i varje del efter frystorkning och hartsinbäddning (FD) och frystorkning måste hanteras noggrant, för att inte skada cellerna som ska observeras och analyseras. Eftersom röntgenmikroanalys inte bara innebär många steg, utan också kostar mycket, är det mycket beklagligt att dra en felaktig slutsats om de celler som analyseras är skadade celler eller döda celler efter långvarig och flerstegsbehandling. Till exempel har myokardceller separerade genom kollagenasbehandling två former, en är lång stav och den andra är rund. Den senare är en döende cell som skadas under cellseparationen.
Innehållet och fördelningen av elektrolyter i dessa två typer av celler är mycket olika under biologiskt mikroskop. Na är mycket högt och K är mycket lågt i runda myokardceller, och ca-koncentrationen i linjära dendriter är mycket hög. Jämfört med andra analytiska metoder är det bevisat att det höga Na och det låga K i cirkulära celler och det höga ca i mitokondrier är resultatet av cellmembranskador under cellseparation. Den kalla fixeringsmetoden för celler och vävnader är ofta att fixera dem genom att släcka först och sedan lagra dem i flytande kväve. Släckande fixering är mycket viktig för konserveringseffekten. Levande celler eller färska vävnader är rika på vatten. Vid släckning är det ofta så att de delar av celler eller vävnader som är i direkt kontakt med kryoskyddsmedel (särskilt vid släckning med flytande kväve) fryses och fixeras först, vilket bildar ett "skal", vilket hindrar frysning och fixering av det centrala del av celler. När man gör röntgenmikroanalys finner man därför ofta att det finns iskristaller i mitten av större celler. För att förhindra att detta inträffar används ett ämne med högre smältpunkt än flytande kväve men en torktemperatur lägre än 806c som kylmedel. Det finns många sådana ämnen, men den lättast tillgängliga är koncentrerad propan (kokpunkt-42．120c, smältpunkt-187．10c, molekylvikt-44.1), som har snabbaste kylningshastigheten. Men dess nackdel är brandfarlighet.
Det biologiska mikroskopet kan sätta muskelfibern på en speciell ram, och när muskelfibern drar ihop sig till en viss fas och behöver fixeras startas munstycket omedelbart, så att den flytande propanen sprayas på muskelfibern för att släcka och fixera Det. Därefter tas muskelfibrerna ut tillsammans med stativet och läggs i flytande kväve. Om blodceller eller separerade celler fixeras, centrifugera först med låg hastighet för att koncentrera cellerna, överför cellerna till ett litet silverrör med god värmeledningsförmåga och lägg det lilla röret i flytande propan för frysning och fixering. Vid fixering av råttbukspottkörteln i Hall laboratorium förkyldes två stålblock med flytande helium (eller flytande kväve), och två kopparblock placerades framför och bakom bukspottkörteln med en tång, så att tanterna släcktes och fixerades. Vävnad eller celler kan lagras under lång tid efter att ha släckts och fixerats och överförts till flytande kväve.
