Introduktion till volymen av vävnadsblock i biologiskt mikroskop
Ett biologiskt mikroskop med en strålkastare kan flytta rampljuset upp och ner för att uppnå måttlig ljusstyrka, och öppningen av variabelöppningen kan också ändras för att uppnå måttlig ljusstyrka. Om ljuset är från solen kan rampljuset höjas på lämpligt sätt och öppningen av det variabla ljuset kan förstoras på lämpligt sätt. Om ljuset är för starkt kan rampljuset sänkas på lämpligt sätt och skärningens öppning kan minskas på lämpligt sätt. Om du fortfarande känner dig bländande i den här situationen kan du välja att placera ett lämpligt filter på konsolen under rampljuset. Denna ek kan uppnå en ljusstyrka som tillfredsställer dig. Naturligtvis kan justering av de övre och nedre positionerna i rampljuset ändra bländarstorleken för ljusavläsningen och välja lämpliga filter, vilket kräver en viss period av övning och erfarenhet.
En mycket viktig fråga i biologisk mikroskopi är processen för provtagning och isolerande celler. Efter frystorkning och harts inbäddning (FD) måste de frysta ultratunna sektionerna noggrant behandlas för att säkerställa att 65-elementinnehållet i varje del inte skadas under observation och analys. På grund av de många stegen och höga kostnaderna i röntgenmikroanalys är det beklagligt att dra felaktiga slutsatser om de analyserade cellerna är skadade eller döda efter långvarig och flerstegsbehandling. Myokardcellerna separerade genom gelatinasbehandling har två former, en är lång stavformad och den andra är cirkulär. Det senare hänvisar till döende celler som är skadade under processen för cellseparation.
Innehållet och distributionen av elektrolyter i dessa två typer av celler är mycket olika under ett biologiskt mikroskop. NA är mycket hög och K är extremt låg i cirkulära kardiomyocyter, och koncentrationen av Ca i linjära dendriter är mycket hög. Efter verifiering med andra analysmetoder har det bevisats att den höga Na och låga K i cirkulära celler och den höga Ca i mitokondrier är resultatet av membranskador under cellseparation. Den kalla fixeringsmetoden för celler och vävnader involverar ofta först släckning och sedan lagrar dem i flytande kväve. Kylning av fixering är avgörande för bevarandeeffekten. Levande celler eller färska vävnader är rika på vatten, och när de släcks är de delar av cellerna eller vävnaderna som kommer i direktkontakt med kylmedlet (särskilt när man använder flytande kväve för kylning) ofta fryst och fixeras först, och bildar ett "skal" som hindrar den centrala delen av cellerna från att krossas och fixas. Därför, vid genomförande av röntgenmikroanalys, har det ofta visat att iskristaller finns i den centrala delen av större celler. För att förhindra att denna situation inträffar används ett ämne med en smältpunkt högre än flytande kväve men lägre med 806C som köldmedium. Det finns många av dessa ämnen, men de är enkla att få och de mest prisvärda är koncentrerad propan (kokpunkt 42.120c, smältpunkt 187.10c, molekylvikt 44.1), som också har en snabb kylningshastighet. Men dess nackdel är att det är brandfarligt.
